NEUROPICT : Plateforme d’Imagerie cellulaire et tissulaire
En bref
Notre plateforme NEUROPICT permet de faire de l’imagerie multi-échelle de la cellule à l’organisme entier dans le domaine de la recherche en Neurosciences.
Nous formons les nouveaux utilisateurs et leur proposons aide et conseils. Nous pouvons également collaborer à des projets scientifiques et technologiques.
La plateforme compte aujourd’hui 9 systèmes d’acquisition et 1 station d’analyse:
- un microscope à feuille de lumière
- un microscope multiphoton
- trois microscopes confocaux
- trois microscopes à illumination structurée
- un microscope à épifluorescence, scanner 4 lames.
- Une station d’analyse d’images Imaris.
Tout nouvel utilisateur suivra une formation pour devenir autonome sur ces microscopes et pourra bénéficier d’une assistance grâce au personnel technique investi dans ce plateau.
Réservation
La réservation est obligatoire et se fait via le site internet GIPSI. Si vous souhaitez utiliser notre plateforme d’imagerie, veuillez contacter Sandrine Guyon : sandrine.guyon[At]universite-paris-saclay.fr
Tarification
Les heures d’utilisation sont facturées chaque semestre.
| Internes à NeuroPSI | Autres académiques | |
| Confocal et bi-photon | 15 € | 20 € |
| Feuille de lumière | 20 € | 30 € |
| Illumination structurée | 2 à 4€ (motorisée) | 10 € |
| Analyse d’image – Imaris | 2 € | 10 € |
Responsables opérationnelles
Sandrine GUYON – Ingénieure de Recherche CNRS
Aurélie HEUZE – Ingénieure d’Études CNRS
Référent scientifique
Julien BOUVIER – Directeur de recherche CNRS
UltraMicroscope II, Miltenyi Biotec
Objectives :
- 1.1X objective lens, 0.1 NA Working distance: 15.7 mm (H2O) / 16.0 mm (Clarity/Scale) / 17.6 mm (DBE)
Corrected for: 450-850 nm - 4X objective lens, 0.3 NA Working distance: 5.6-6.0 mm
Lasers and filter sets :
- 488 Laser ET525/50m Ø32 mm emission filter
- 561 Laser ET590/33m Ø32 mm emission filter
- 639Laser ET680/30m
Camera : Andor Zyla 5.5 sCMOS Camera
Microscope confocal Zeiss LSM880 Airyscan
Objectives :
- Plan apochromat 10x/0,45 (air)
- Plan apochromat 20x/0,8 (air)
- Plan apochromat 40x/1,3 (oil) with DIC
Lasers :
- 458nm, 488nm, 514nm, 561nm et 633nm
Scanners :
- 3PMTs (mode spectral) + Airy scan 32 GaAsp-PMT
Microscope multiphoton Leica SP8
Objectives :
- 25x HC Fluotar L, 0.95 NA, immersion : water ; working distance 2,5
Lasers :
- 405nm, 448nm, 488nm, 552nm
- Coherent Chameleon Vision II
Filter sets :
- BP 585/40, BP 525/50, SP680 ; Dichroïc BS 560.
Scanners :
- 2 PMTs (spectral detection) and 2 PMTsT-RLD (Green/Red).
Microscope confocal Leica TCS SP8 AOBS – DM6000CS
Objectives :
- 10x Plan APO, 0,4 NA ; immersion: dry ; working distance 2,2
- 25x IRAPO, 0,95 NA ; immersion: water ; working distance 2,5
- 40x Plan APO, 1,1 NA ; immersion: water ; working distance 0,65
Lasers :
- Ar, 65 mW: 458, 476, 488, 496, 514 nm
- HeNe, 2 mW: 594 nm
- HeNe, 10 mW : 633 nm
- DPSS, 20 mW: 561 nm
- UV : Diode, 50mW : 405 nm.
Microscope confocal Zeiss LSM 700
Objectives :
- 10x EC Plan Néofluar, 0.3 NA, immersion: dry ; working distance 5,2
- 20x EC Plan Néofluar, 0.5 NA, immersion: dry ; working distance 2,0
- 40x EC Plan Néofluar, 1.3 NA, immersion: oil ; working distance 0,21
- 63x Plan Apochromat , 1.4 NA, immersion: oil ; working distance 0,19
Lasers :
- 405nm, 5mW
- 488nm, 10mW
- 555nm, 10mW
- 639nm, 5mW
Filters sets :
- 49 DAPI shift free, EX G 365, BS FT 395, EM BP 445/50
- 38 Endow GFP shift free, EX BP 470/40, BS FT 495, EM BP 525/50
- 20 Rhodamin shift free, EX BP 546/12, BS FT 560, EM BP 575-640
3 microscopes à illumination structurée (Apotome 2 Zeiss)
1 microscope à épifluorescence avec scanner 4 lames (AxioImager M2 Zeiss)
1 station d’analyse d’image
- PC Dell PRECISION 7920
- 2x processeur Xeon Gold 6248R (24 Coeurs, 3.0 – 4.0 Ghz, 35.75 Mo cache)
- 1 To RAM
- GPU NVIDIA RTX A60000 (48 Go RAM, 10752 coeurs CUDA)
- Ecran 32 pouces.
Logiciels :
- IMARIS for Neuroscientists avec extensions « Stitcher » et « Cell », version 9.9
- ZEN lite
- LasX
- Fiji
- DeepLabCut.
