NEUROPICT : Plateforme d’Imagerie cellulaire et tissulaire

En bref

Notre plateforme NEUROPICT permet de faire de l’imagerie multi-échelle de la cellule à l’organisme entier dans le domaine de la recherche en Neurosciences.

La plateforme NEUROPICT met à disposition des technologies de pointe et une expertise en microscopie photonique pour les chercheurs internes ou externes à l’Institut des Neurosciences Paris-Saclay.

Nous formons les nouveaux utilisateurs et leur proposons aide et conseils. Nous pouvons également collaborer à des projets scientifiques et technologiques.

La plateforme compte aujourd’hui quatre systèmes d’acquisition :

  • un microscope à feuille de lumière
  • deux microscopes confocaux à balayage laser
  • un microscope multiphoton

Tout nouvel utilisateur suivra une formation pour devenir autonome sur ces microscopes et pourra bénéficier d’une assistance grâce au personnel technique investi dans cette plateforme.

Réservation
La réservation est obligatoire et se fait via le site internet GIPSI. Si vous souhaitez utiliser notre plateforme d’imagerie, veuillez contacter Sandrine Guyon : NeuroPICT(at)neuro-psi.fr

Tarification
Les heures d’utilisation sont facturées chaque semestre.
Pour l’imagerie confocale, le tarif horaire est de 15€ pour les membres de l’institut et de 20€ pour les académiques externes. Pour l’imagerie à feuille de lumière et multiphotonique, un devis sera établi en fonction de chaque projet de recherche.

Responsable opérationnelle

Sandrine GUYON – Ingénieure de Recherche CNRS

Référent scientifique

Julien BOUVIER – Chargé de recherche CNRS

Membres

Sonya GALANT – Ingénieure d’Études CNRS
Aurélie HEUZE – Ingénieure d’Études CNRS
Fabrice LICATA – Technicien

Microscope à feuille de lumière UltraMicroscope II, Miltenyi Biotec

Responsable : Aurélie Heuzé

Objectives :

  • 1.1X objective lens, 0.1 NA Working distance: 15.7 mm (H2O) / 16.0 mm (Clarity/Scale) / 17.6 mm (DBE)
    Corrected for : 450-850 nm
  • 4X objective lens, 0.3 NA Working distance: 5.6-6.0 mm

Lasers and filter sets :

  • 488 Laser with ET525/50 filter set
  • 561 Laser with ET590/33 filter set
  • 639 Laser ET680/30 filter set

Camera : Andor Zyla 5.5 sCMOS

Microscope confocal Leica TCS SP8 AOBS – DM6000CS

Responsable : Sonya Galant

Objectives :

  • 10x Plan APO, 0.4 NA, dry, working distance 2.2
  • 25x IRAPO, 0.95 NA, water immersion, working distance 2.5
  • 40x Plan APO, 1.1 NA, water immersion, working distance 0.65

Lasers :

  • UV, Diode, 405 nm, 50mW
  • Ar, 458, 476, 488, 496, 514 nm, 65 mW
  • DPSS, 561 nm, 20 mW
  • HeNe, 594 nm, 2 mW
  • HeNe, 633 nm,10 mW
Microscope confocal Zeiss LSM 700

Responsable : Sandrine Guyon

Objectives :

  • 10x EC Plan Néofluar , 0.3 NA, dry, working distance 5.2
  • 20x EC Plan Néofluar, 0.5 NA, dry, working distance 2.0
  • 40x EC Plan Néofluar, 1.3 NA, oil immersion, working distance 0.21
  • 63x Plan Apochromat , 1.4 NA, oil immersion, working distance 0.19

Lasers :

  • 405nm, 5mW
  • 488nm, 10mW
  • 555nm, 10mW
  • 639nm, 5mW

Filter sets :

  • 49 DAPI shift free, EX G 365, BS FT 395, EM BP 445/50,
  • 38 Endow GFP shift free, EX BP 470/40, BS FT 495, EM BP 525/50
  • 20 Rhodamin shift free, EX BP 546/12, BS FT 560, EM BP 575-640
Microscope multiphoton Leica SP8

Responsable : Fabrice Licata

Objectives : 25X HC Fluotar L, 0,95 NA, water immersion, working distance 2.5

Lasers :

  • 405nm
  • 448nm
  • 488nm
  • 552nm
  • Coherent CHAMELEON VISION II

Scanners : 2 PMTs (spectral detection) and 2 PMTsT-RLD (Green/Red)