NEUROPICT : Plateforme d’Imagerie cellulaire et tissulaire

En bref

Notre plateforme NEUROPICT permet de faire de l’imagerie multi-échelle de la cellule à l’organisme entier dans le domaine de la recherche en Neurosciences.

La plateforme NEUROPICT met à disposition des technologies de pointe et une expertise en microscopie photonique pour les chercheurs internes ou externes à l’Institut des Neurosciences Paris-Saclay.

Nous formons les nouveaux utilisateurs et leur proposons aide et conseils. Nous pouvons également collaborer à des projets scientifiques et technologiques.

La plateforme compte aujourd’hui 10 systèmes d’acquisition et 1 station d’analyse:

  • 1 microscope à feuille de lumière (ultramicroscope Miltenyi)
  • 2 microscopes biphotons (Leica SP8 et Femtonics Femto2D Dual)
  • 3 microscopes confocaux (Zeiss LSM880 Airyscan, LSM700 et Leica SP8)
  • 3 microscopes à illumination structurée (Apotomes2, Zeiss)
  • 1 microscope à épifluorescence, scanner 4 lames (Axioimager M2, Zeiss)
  • 1 station d’analyse d’images Imaris

Tout nouvel utilisateur suivra une formation pour devenir autonome sur ces microscopes et pourra bénéficier d’une assistance grâce au personnel technique investi dans ce plateau.

Réservation
La réservation est obligatoire et se fait via le site internet GIPSI. Si vous souhaitez utiliser notre plateforme d’imagerie, veuillez contacter Sandrine Guyon : sandrine.guyon[At]universite-paris-saclay.fr

Tarification
Les heures d’utilisation sont facturées chaque semestre.

Internes à NeuroPSI Autres académiques
Confocal et bi-photon 15 € 25 €
Confocal Airyscan 20 € 30 €
Feuille de lumière 20 € 30 €
Illumination structurée 2 à 4€ (motorisée) 10 €
Analyse d’image – Imaris 2 € 10 €

Responsables opérationnelles

Sandrine GUYON – Ingénieure de Recherche CNRS
Aurélie HEUZE – Ingénieure d’Études CNRS

Référent scientifique

Julien BOUVIER – Directeur de recherche CNRS

UltraMicroscope II, Miltenyi Biotec

Objectives :

  • 1.1X objective lens, 0.1 NA Working distance: 15.7 mm (H2O) / 16.0 mm (Clarity/Scale) / 17.6 mm (DBE)
    Corrected for: 450-850 nm
  • 4X objective lens, 0.3 NA Working distance: 5.6-6.0 mm

Lasers and filter sets :

  • 488 Laser ET525/50m Ø32 mm emission filter
  • 561 Laser ET590/33m Ø32 mm emission filter
  • 639Laser ET680/30m

Camera : Andor Zyla 5.5 sCMOS Camera

Microscope confocal Zeiss LSM880 Airyscan

Objectives :

  • Plan apochromat 10x/0,45 (air)
  • Plan apochromat 20x/0,8 (air)
  • Plan apochromat 40x/1,3 (oil) with DIC

Lasers :

  • 458nm, 488nm, 514nm, 561nm et 633nm

Scanners :

  • 3PMTs (mode spectral) + Airy scan 32 GaAsp-PMT
Microscope biphoton Leica SP8

Objectives :

  • 25x HC Fluotar L, 0.95 NA, immersion : water ; working distance 2,5

Lasers :

  • 405nm, 448nm, 488nm, 552nm
  • Coherent Chameleon Vision II

Filter sets :

  • BP 585/40, BP 525/50, SP680 ; Dichroïc BS 560.

Scanners :

  • 2 PMTs (spectral detection) and 2 PMTsT-RLD (Green/Red).
Microscope biphoton Femtonics, Femto2D Dual – (Description en cours)

Objectives :20x et 4x
Lasers :
Filters sets :
Scanner résonnant et détecteurs externes non déscannés PMT:

Microscope confocal Leica TCS SP8 AOBS – DM6000CS


Objectives :

  • 10x Plan APO, 0,4 NA ; immersion: dry ; working distance 2,2
  • 25x IRAPO, 0,95 NA ; immersion: water ; working distance 2,5
  • 40x Plan APO, 1,1 NA ; immersion: water ; working distance 0,65

Lasers :

  • Ar, 65 mW: 458, 476, 488, 496, 514 nm
  • HeNe, 2 mW: 594 nm
  • HeNe, 10 mW : 633 nm
  • DPSS, 20 mW: 561 nm
  • UV : Diode, 50mW : 405 nm.
Microscope confocal Zeiss LSM 700


Objectives :

  • 10x EC Plan Néofluar, 0.3 NA, immersion: dry ; working distance 5,2
  • 20x EC Plan Néofluar, 0.5 NA, immersion: dry ; working distance 2,0
  • 40x EC Plan Néofluar, 1.3 NA, immersion: oil ; working distance 0,21
  • 63x Plan Apochromat , 1.4 NA, immersion: oil ; working distance 0,19

Lasers :

  • 405nm, 5mW
  • 488nm, 10mW
  • 555nm, 10mW
  • 639nm, 5mW

Filters sets :

  • 49 DAPI shift free, EX G 365, BS FT 395, EM BP 445/50
  • 38 Endow GFP shift free, EX BP 470/40, BS FT 495, EM BP 525/50
  • 20 Rhodamin shift free, EX BP 546/12, BS FT 560, EM BP 575-640
3 microscopes à illumination structurée (Apotome 2 Zeiss)
1 microscope à épifluorescence avec scanner 4 lames (AxioImager M2 Zeiss)
1 station d’analyse d’image
  • PC Dell PRECISION 7920
  • 2x processeur Xeon Gold 6248R (24 Coeurs, 3.0 – 4.0 Ghz, 35.75 Mo cache)
  • 1 To RAM
  • GPU NVIDIA RTX A60000 (48 Go RAM, 10752 coeurs CUDA)
  • Ecran 32 pouces.

Logiciels :

  • IMARIS for Neuroscientists avec extensions « Stitcher » et « Cell », version 9.9
  • ZEN lite
  • LasX
  • Fiji
  • DeepLabCut.