2024

• Parain, K., Chesneau, A., Locker, M., Borday, C. and Perron, M. (2024). Regeneration from three cellular sources and ectopic mini-retina formation upon neurotoxic retinal degeneration in Xenopus. Glia. Jan 15. doi: 10.1002/glia.24502

2023

• Bocquet, B., Borday, C., Erkilic, N., Mamaeva, D., Donval, A., Masson, C., Parain, K., Kaminska, K., Quinodoz, M., Perea-Romero, I., et al. (2023). TBC1D32 variants disrupt retinal ciliogenesis and cause retinitis pigmentosa. JCI Insight 8, e169426

• Donval, A., Hernandez Puente, C. V., Lainé, A., Roman, D., Vessely, R., Julien, L., Perron, M. and Locker, M. (2023). Awakening adult neural stem cells: NOX signalling as a positive regulator of quiescence to proliferation transition in the Xenopus retina. Development dev.201463.

Research Highlight

• Parain, K., Donval, A., Chesneau, A., Lun, J. X., Borday, C. and Perron, M. (2023). Generating Retinal Injury Models in Xenopus Tadpoles. J Vis Exp 200, e65771.

2022

• Hottin C, Perron M, Roger JE. (2022). GSK3 Is a Central Player in Retinal Degenerative Diseases but a Challenging Therapeutic Target. Cells 11(18), 2898.
• Meléndez García R, Haccard O, Chesneau A, Narassimprakash H, Roger J, Perron M, Marheineke K, Bronchain O. (2022). A non-transcriptional function of Yap regulates the DNA replication program in Xenopus laevis – eLife 11:e75741.
• Parain K, Lourdel S, Donval A, Chesneau A, Borday C, Bronchain O, Locker M, Perron M. (2022). CRISPR/Cas9-Mediated Models of Retinitis Pigmentosa Reveal Differential Proliferative Response of Müller Cells between Xenopus laevis and Xenopus tropicalis – Cells 11(5):807.

2021

• Kisseleff E, Vigouroux RJ, Hottin C, Lourdel S, Thomas L, Shah P, Chédotal A, Perron M, Swaroop A, Roger JE (2021). Glycogen Synthase Kinase 3 Regulates the Genesis of Displaced Retinal Ganglion Cells. – eNeuro 8(5):ENEURO.0171-21.2021.

2020

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• This article was recommended in F1000Prime, 10 Oct 2015 ; F1000Prime.com/1061749
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2003

• Perron M, Boy S, Amato MA, Viczian A, Koebernick K, Pieler T, Harris WA. (2003). A novel function for Hedgehog signalling in retinal pigment epithelium differentiation. Development 130:1565-77.

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• Ohnuma S, Mann F, Boy S, Perron M, Harris WA. (2002). Lipofection strategy for the study of Xenopus retinal development. Methods 28:411-9.

2001

• Nutt SL, Bronchain OJ, Hartley KO, Amaya E. (2001). Comparison of morpholino based translational inhibition during the development of Xenopus laevis and Xenopus tropicalis. Genesis 30(3):110-3.

2000

• Perron, M. and Harris, W.A. (2000). Retinal stem cells in vertebrates. Bioessays 22, 685-688.
• Perron, M. and Harris, W.A. (2000). Determination of vertebrate retinal progenitor cell fate by the Notch pathway and basic helix-loop-helix transcription factors. Cellular and Molecular Life Sciences 57 : 215-223.

• Pint of Science 2018
• Rencontre avec l’écrivain François Bon, croisement entre l’art et la science 2012 : digression sur les explorateurs du vivant ; danse avec les xénopes
• Jeudi de la recherche 2016
• Jeudi de la recherche 2008

Écoles doctorales de rattachement

Notre équipe est affiliée à l’École Doctorale « Signalisations et Réseaux Intégratifs en Biologie » (BIO-SigNE) et à l’école doctorale «Structure et Dynamique des Systèmes Vivants» (SDSV) de l’Université Paris-Saclay.

Les étudiant.e.s en thèse de l’équipe

• Jing Xian Lun
Thèse: Oct 22 – Sept 26 (financement CSC, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse: Caroline Borday et Muriel Perron
Sujet: Façonner l’environnement neuroinflammatoire pour favoriser la régénération de la rétine

• Julien Ricard
Thèse: Oct 23 – Sept 26 (financement Fondation de France, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse: Juliette Bitard et Muriel Perron
Sujet: Vers une médecine régénérative pour traiter les dystrophies rétiniennes : caractérisation de facteurs régulant le potentiel de régénération de la glie de Müller

• Demi Van Westendorp
Thèse: Oct 23 – Sept 26 (financement ministère, École doctorale SDSV)
Directrice de thèse: Patrick Pla et Muriel Perron
Sujet: Signalisation Notch : nouvel acteur du couplage inflammation/régénération dans la rétine ?

• Violeta Hernandez Puente
Thèse: Jan 22 – Dec 25 (CONACYT scholarship, École doctorale SDSV)
Directrice de thèse: Morgane Locker
Sujet: Redox control of stemness: an analysis of ROS function and antioxidant pathways in retinal stem cells

• Catherine Hottin
Thèse: Oct 20 – Sept 23 (bourse du ministère, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Co-direction : Jérôme Roger
Sujet : Deciphering Glycogen Synthase Kinase 3 neuroprotective effects to treat retinal degenerative diseases
Finale de « Ma Thèse en 180 secondes » de l’Université Paris-Saclay

• Diana García-García
Thèse : Nov 17 – Dec 20 (bourse de la FRM, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Sujet : Les cellules de Müller et la régénération de la rétine : rôle de la voie de signalisation Hippo/YAP
Prix Jeunes Talents France L’Oréal-UNESCO pour les femmes et la science 2019

• Rodrigo Meléndez García
Thèse : Sept 16 – August 20 (bourse du CONACYT, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Co-direction : Odile Bronchain
Sujet : YAP as a regulator of DNA replication timing

• Elena Braginskaja
Thèse : Oct 14 – Mars 18 (bourse du gouvernement Allemand, Ecole doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Co-direction : Jérôme Roger
Sujet : Rôle de la Glycogène Synthase Kinase 3 dans le Développement et l’Homéostasie de la Rétine
Finale de « Ma Thèse en 180 secondes » de l’Université Paris-Saclay

• Annaïg Hamon
Thèse : Oct 14 – Déc 17 (bourse de Retina France, 4ème année de l’ARC, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Sujet : Étude de la signalisation Hippo/YAP dans les cellules gliales de Müller en conditions physiologiques et pathologiques de dégénérescence rétinienne chez la souris

• Pauline Cabochette
Thèse : Oct 11 – Déc 14 (bourse du ministère, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Co-direction : Odile Bronchain
Sujet : Intégration de la voie Hippo dans le réseau de signalisation impliqué dans la balance prolifération-différenciation des cellules souches de la rétine

• Warif El Yakoubi
Thèse : Oct 08 – Oct 12 (bourse du ministère, 4ème année de Retina France, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Co-direction : Morgane Locker
Sujet : Étude du rôle des facteurs de transcription Hairy dans le contrôle de la prolifération des cellules souches et précurseurs rétiniens

• Nicolas Mazurier
Thèse : Oct 09 – Dec 12 (bourse du Neuropôle, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Sujet : Identification et caractérisation de nouveaux marqueurs des cellules souches neurales de la rétine

• Jean-Philippe Dullin
Thèse : Oct 06 – Oct 10 (bourse du ministère, 4ème année de ARC, École doctorale BIO-SigNE)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Sujet : Diversité neuronale au sein de la rétine : Étude de régulateurs transcriptionnels et post-transcriptionnels

• Marcos Amato
Thèse : Janv. 02 – Fév. 05 (financée sur contrat Européen, École doctorale GGC)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Sujet : Étude du rôle de la cascade Hedgehog dans la prolifération des cellules souches rétiniennes chez Xenopus laevis.

• Sébastien Boy
Thèse : Oct 01 – Déc. 04 (bourse du ministère, École doctorale GGC)
Directrice de thèse : Muriel Perron
Sujet : Étude de facteurs transcriptionnels et post-transcriptionnels impliqués dans la spécification des cellules rétiniennes chez Xenopus laevis.

Plateau technique de Transgenèse et Edition du génome chez le xénope

Au sein de l’équipe, nous développons des outils et techniques de transgenèse et d’édition du génome et diverses techniques de knock-down. Voici quelques exemples :

1. Via la technique de transgenèse REMI, nous avons développé, chez Xenopus laevis, un modèle de dégénérescence des photorécepteurs, inductible et réversible, afin d’étudier les processus de régénération de la rétine (voir Chesneau et al. Methods Mol Biol. 2018 ; Langhe et al., Glia 2017).
2. Nous générons et/ou maintenons au laboratoire des lignées transgéniques de xénopes rapportrices de voies de signalisation (Wnt : Borday et al. Plos One 2018 ; Borday et al. Development 2012) ou spécifiques d’un type cellulaire rétinien comme les cellules de Müller (travaux en cours).
3. Nous avons mis au point, à la fois chez Xenopus laevis et Xenopus tropicalis, des modèles de rétinite pigmentaire (maladie dégénérative des photorécepteurs chez l’homme) par la méthode CRISPR-Cas9. Ces modèles nous permettent d’étudier la réactivation des cellules souches en conditions pathologiques (travaux en cours).
4. Nous utilisons en routine les oligonucléotides antisens morpholinos pour bloquer la traduction ou l’épissage d’un gène cible. Nous avons mis au point l’utilisation de morpholinos photoactivables permettant une perte de fonction inductible ou réversible (voir Cabochette et al. Elife 2015).
5. Jusqu’à présent, pour étudier la fonction d’une protéines les scientifiques utilisaaient des techniques ciblant le gène ou les transcrits codant la protéine d’intérêt. Nous avons récemment mis au point chez le xénope une nouvelle technique nommée Trim-Away, qui permet de dépléter directement une protéine (travaux en cours). Cette technique exploite les propriétés d’une protéine récemment découverte appelée TRIM21 qui en combinaison avec un anticorps reconnaissant la protéine d’intérêt a la capacité remarquable de cibler le complexe anticorps-protéine vers sa destruction dans le protéasome.
6. Compte tenu de ces expertises chez le xénope, nous établissons régulièrement des collaborations avec des équipes extérieures au laboratoire (quelques exemples : Sena et al. Development 2019 ; Della Gaspera et al., Dev Biol 2018 ; Schietroma et al., JCB 2017 ; Kaya et al. J. Neurosci. 2012).