L'unité d’appui à la recherche TEFOR Paris-Saclay (UAR TPS) a pour ambition de promouvoir l'utilisation de modèles poissons et xénopes en recherche biologique et appliquée. A cette fin, elle propose à la communauté scientifique une gamme de services étendue : hébergement d’animaux, production de lignées d’intérêt par édition du génome, phénotypage par imagerie d’échantillons fixés de grande taille, ainsi qu‘un appui pour la gestion et l’analyse de ces données d’images.
L’unité TPS est soutenue par deux grands instituts de recherche : le CNRS et l'INRAE, ainsi que par l'université Paris-Saclay.

Nos services
TEFOR Paris-Saclay est organisé en trois départements

• La zootechnie (TPS-AQUA) prend en charge la gestion de l’animalerie aquatique installée dans le bâtiment de l’Institut des Neurosciences Paris-Saclay. Elle propose des services d’hébergement et de fourniture de modèles aquatiques ;
• la plateforme technologique TEFOR Core Facility (TPS-TCF) propose des services en édition du génome (CRISPR-Cas9), phénotypage par imagerie tridimensionnelle et gestion des bases de données d’images 3D ;
• la cellule de coordination des affaires scientifiques (TPS-CCAS), orchestre la gestion administrative de la plateforme, mène des projets structurants pour et avec la communauté scientifique et établit les actions de communication pour promouvoir l’activité de services de TPS.

L’UAR TEFOR Paris-Saclay est une composante importante de l’infrastructure CELPHEDIA. Elle pilote le nœud CELPHEDIA-TEFOR pour l’axe technologique édition du génome, et couvrir le périmètre d’organismes modèles vertébrés aquatiques et drosophile.
Enfin, l’UAR TPS souhaite créer un réseau de centres experts sur les modèles poissons afin de proposer une offre de services complète et innovante, couvrant au mieux les besoins de la communauté scientifique. La gestion des projets réalisés pour des tiers utilisateurs est proposée via un guichet unique : l’utilisateur dispose d’un seul interlocuteur, lui assurant un suivi simplifié de son projet, avec aussi peu de procédures administratives que possible.

Plus d’informations
Site web : https://tps.tefor.net/
Contact :
Twitter : @TEFOR_PS

Publications récentes

Automated segmentation of thick confocal microscopy 3D images for the measurement of white matter volumes in zebrafish brains.
Lempereur, S., Jenett, A., Machado, E., Arganda-Carreras, I., Simion, M., Affaticati, P., Joly, J., & Talbot, H. (2020).
Mathematical Morphology – Theory and Applications, 4(1), 31-45. doi: 10.1515/mathm-2020-0100

Non-thalamic origin of zebrafish sensory relay nucleus: convergent evolution of visual pathways in amniotes and teleosts.
Bloch, S., Hagio, H., Thomas, M., Heuzé, A., Hermel, J.M., Lasserre, E., Colin, I., Saka, K., Affaticati, P., Jenett, A., Kawakami, K., Yamamoto, N., Yamamoto, K. (2020) Preprint. 2020 May. doi: 10.1101/2020.05.16.099010

Registered, standardized and interactive: a review of online resources for zebrafish neuroanatomy.
Jenett, A. Gerlai RT (ed). Behavioral and Neural Genetics of Zebrafish. San Diego: Elsevier Inc./Academic Press, 2020 Apr. Hardcover ISBN: 9780128175286, eBook ISBN: 9780128175293

Mesencephalic origin of the inferior lobe in zebrafish.
Bloch S., Thomas M., Colin I., Galant S., Machado E., Affaticati P., Jenett A., Yamamoto K.
BMC Biol. 2019 Mar 8;17(1):22. Pubmed

The role of neuro-epithelial-like and radial-glial stem and progenitor cells in development, plasticity, and repair.
Lindsey, B.W., Hall, Z.J., Heuzé, A., Joly, J.S., Tropepe, V., Kaslin, J.
Prog. Neurobiol. 2018 Nov. doi: 10.1016/j.pneurobio.2018.06.004, PMID: 29902500

Fibrillarin is essential for S-phase progression and neuronal differentiation in zebrafish dorsal midbrain and retina.
Bouffard, S., Dambroise, E., Brombin, A., Lempereur, S., Hatin, I., Simion, M., Corre, R., Bourrat, F., Joly, J.S., Jamen, F.
Developmental Biology. 2018 May 1. doi: 10.1016/j.ydbio.2018.02.006, PMID: 29477341

zPACT: Tissue Clearing and Immunohistochemistry on Juvenile Zebrafish Brain
Pierre Affaticati, Matthieu Simion, Elodie De Job, Laurie Rivière, Jean-Michel Hermel, Elodie Machado, Jean-Stéphane Joly, Arnim Jenett
Bio-Protocol 2017, Dec 5; 7;23:2636.

Human amniotic fluid contaminants alter thyroid hormone signalling and early brain development in Xenopus embryos
Fini JB, Mughal BB, Le Mével S, Leemans M, Lettmann M, Spirhanzlova P, Affaticati P, Jenett A, Demeneix BA
Sci Rep. 2017 Mar 7;7:43786. Pubmed

High-resolution 3D imaging of whole organ after clearing: taking a new look at the zebrafish testis.
Frétaud M, Rivière L, De Job É, Gay S, Lareyre JJ, Joly JS, Affaticati P, Thermes V
Sci Rep. 2017 Feb 17;7:43012. Pubmed

Imaging of viral neuroinvasion in the zebrafish reveals that Sindbis and chikungunya viruses favour different entry routes.
Passoni G, Langevin C, Palha N, Mounce BC, Briolat V, Affaticati P, De Job E, Joly JS, Vignuzzi M, Saleh MC, Herbomel P, Boudinot P, Levraud JP
Dis Model Mech. 2017 Jul 1;10(7):847-857. Pubmed

Comparative analysis of monoaminergic cerebrospinal fluid-contacting cells in Osteichthyes (bony vertebrates).
Xavier AL, Fontaine R, Bloch S, Affaticati P, Jenett A, Demarque M, Vernier P, Yamamoto K
J Comp Neurol. 2017 Jun 15;525(9):2265-2283. Pubmed

Postembryonic Fish Brain Proliferation Zones Exhibit Neuroepithelial-Type Gene Expression Profile.
Dambroise E, Simion M, Bourquard T, Bouffard S, Rizzi B, Jaszczyszyn Y, Bourge M, Affaticati P, Heuzé A, Jouralet J, Edouard J, Brown S, Thermes C, Poupon A, Reiter E, Sohm F, Bourrat Joly JS
Stem Cells. 2017 Jun;35(6):1505-1518. Pubmed

A novel brain tumour model in zebrafish reveals the role of YAP activation in MAPK- and PI3K-induced malignant growth.
Mayrhofer M, Gourain V, Reischl M, Affaticati P, Jenett A, Joly JS, Benelli M, Demichelis F, Poliani PL,
Sieger D, Mione M

Dis Model Mech. 2017 Jan 1;10(1):15-28. Pubmed