NeuroPICT : Plateforme d’Imagerie Cellulaire et Tissulaire
Responsable scientifique : Julien Bouvier (CR, CNRS)
Responsable opérationnelle : Sandrine Guyon (IR, CNRS)
Contact:
Notre plateforme permet de faire de l’imagerie multi-échelle de la cellule à l’organisme entier dans le domaine de la recherche en Neurosciences. Nous mettons à disposition des technologies de pointe et une expertise en microscopie photonique pour les chercheurs internes ou externes à l’Institut des Neurosciences Paris-Saclay. Nous formons les nouveaux utilisateurs et leur proposons aide et conseils. Nous pouvons également collaborer à des projets scientifiques et technologiques.
La plateforme compte aujourd’hui quatre systèmes d’acquisition : un microscope à feuille de lumière, deux microscopes confocaux à balayage laser et un microscope multiphoton. Tout nouvel utilisateur suivra une formation pour devenir autonome sur ces microscopes et pourra bénéficier d’une assistance grâce au personnel technique investi dans cette plateforme.
Réservation
La réservation est obligatoire et se fait via le site internet GIPSI. Si vous souhaitez utiliser notre plateforme d’imagerie, veuillez contacter Sandrine Guyon:
Tarification
Les heures d’utilisation sont facturées chaque semestre.
Pour l’imagerie confocale, le tarif horaire est de 15€ pour les membres de l’institut et de 20€ pour les académiques externes. Pour l’imagerie à feuillet de lumière et multiphotonique, un devis sera établi en fonction de chaque projet de recherche.
Microscope à feuille de lumière UltraMicroscope II , Miltenyi Biotec
Responsable : Aurélie Heuzé
Objectives :
1.1X objective lens, 0.1 NA Working distance: 15.7 mm (H2O) /
16.0 mm (Clarity/Scale) / 17.6 mm (DBE)
Corrected for: 450-850 nm
4X objective lens, 0.3 NA Working distance: 5.6-6.0 mm
Lasers and filter sets :
488 Laser with ET525/50 filter set
561 Laser with ET590/33 filter set
639 Laser ET680/30 filter set
Camera:
Andor Zyla 5.5 sCMOS
Microscope confocal Leica TCS SP8 AOBS – DM6000CS
Responsable : Sonya Galant
Objectives :
10x Plan APO, 0.4 NA, dry, working distance 2.2
25x IRAPO, 0.95 NA, water immersion, working distance 2.5
40x Plan APO, 1.1 NA, water immersion, working distance 0.65
Lasers:
UV, Diode, 405 nm, 50mW
Ar, 458, 476, 488, 496, 514 nm, 65 mW
DPSS, 561 nm, 20 mW
HeNe, 594 nm, 2 mW
HeNe, 633 nm,10 mW
Microscope confocal Zeiss LSM 700
Responsable : Sandrine Guyon
Objectives :
10x EC Plan Néofluar , 0.3 NA, dry, working distance 5.2
20x EC Plan Néofluar, 0.5 NA, dry, working distance 2.0
40x EC Plan Néofluar, 1.3 NA, oil immersion, working distance 0.21
63x Plan Apochromat , 1.4 NA, oil immersion, working distance 0.19
Lasers:
405nm, 5mW
488nm, 10mW
555nm, 10mW
639nm, 5mW
Filter sets:
49 DAPI shift free, EX G 365, BS FT 395, EM BP 445/50,
38 Endow GFP shift free, EX BP 470/40, BS FT 495, EM BP 525/50
20 Rhodamin shift free, EX BP 546/12, BS FT 560, EM BP 575-640
Microscope multiphoton Leica SP8
Responsable : Fabrice Licata
Objectives :
25X HC Fluotar L, 0,95 NA, water immersion, working distance 2.5
Lasers:
405nm
448nm
488nm
552nm
Coherent CHAMELEON VISION II
Scanners:
2 PMTs (spectral detection) and 2 PMTsT-RLD (Green/Red)